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改良 Lillie-Mayer 苏木素染色液
产品简介:
苏木素(Hematoxylin)和伊红(Eosin)联合染色简称 HE 染色,是病理学和组织学常用的一种染色方法。苏木精为碱性天然染料,可使细胞核着色。细胞核内染色质的主要成分是DNA,在DNA 的双螺旋结构中,两条核苷酸链上的磷酸基向外,使DNA双螺旋的外侧带负电荷,呈酸性,很容易不带正电荷的苏木精碱性染料以离子键或氢键结合而被染色。
改良Lillie-Mayer 苏木素染色液无毒,无氧化膜,细胞核染色质着色深而细微,临床上常替代Harris 苏木素染色液。对细胞核染色很清晰,不着染胞质和纤维成分,属进行性
染色,故染色后可以不用盐酸乙醇分化,染色时间约 5~8min,如果是充分氧化后可染色 3~
5min。常用于糖原等特染、酶组化和免疫组化等染色后复染细胞核作对照染色,尤其适用 于经过特殊染色后不能经酸处理时对细胞核的复染。在特殊染色中,常不天青石蓝B液联合染色,使细胞核染色后不被后续的酸性染料所褪色。
苏木素为碱性天然染料,可使细胞核着色。细胞核内染色质的成分主要是DNA,在DNA
双螺旋结构中,两条核苷酸链上的磷酸基向外,使DNA 双螺旋的外侧带负电荷,呈酸性,很容易不带正电荷的苏木素碱性染料以离子键或氢键结合而被染色。苏木素在碱性溶液中呈蓝色,所以细胞核被染成蓝色。
伊红是一种化学合成的酸性染料,在一定条件下可使细胞浆着色。细胞浆的主要成分是蛋白质,为两性化合物,细胞浆的染色不染液的 pH 值密切相关。当染色液 pH 值在胞浆蛋白质等电点(4.7~5.0)以下时,胞浆蛋白质以碱式电离,则细胞浆带正电荷,就可 被带负电荷的酸性染料染色。伊红在水中离解成带负电荷的阴离子,不胞浆蛋白质带正
电荷的阳离子结合,使细胞浆着色,呈现红色。
染色后,用某些特定的溶液将组织过多结合的染色剂脱去,这个过程称为分化作用,所 用的溶液称为分化液。在HE 染色中常用1%盐酸乙醇作为分化液,因酸能破坏苏木素的醌型结构,使组织不色素分离而退色。大多数组织经苏木素染色后,必须用 1%盐酸乙醇分化,使细胞核过多结合的苏木素染料和细胞浆吸附的苏木素染料脱去,再进行伊
红染色,才能保证细胞核不细胞浆染色的分明。
4、返蓝作用:
分化之后,苏木素在酸性条件下处于红色离子状态,呈红色;在碱性条件下处于蓝色
离子状态,呈蓝色。组织切片经酸性乙醇分化后呈红色或粉红色,立即用水除去组织切 片上的酸而中止分化,再用弱碱性水使苏木素染上的细胞核呈现蓝色,这个过程称为返蓝作用或蓝化作用。另外用自来水浸洗也可使细胞核返蓝,但所需时间较长。
产品组成:改良 Lillie-Mayer 苏木素染色液 100ml 500ml RT 避 光
1、酸性乙醇分化液
2、蓝化液,如稀氨水、碳酸锂溶液等
3、系列乙醇
4、伊红染色液
5、4%多聚甲醛
操作步骤(仅供参考):
①□二甲苯作用 2 次,每次 5~10min。
②□(可选)无水乙醇作用 2 次,每次 3~5min。
③□95%的乙醇 3~5min
④□90%的乙醇 3~5min
⑤□80%的乙醇 3~5min
⑥□自来水或蒸馏水冲洗 1~3min
①改良 Lillie-Mayer 苏木素染色液染色 5~8min
②自来水或蒸馏水冲洗 5~10s
③(可选)盐酸乙醇分化 2~5s
④自来水冲洗 20~30s
⑤(可选)蓝化液返蓝 20~40s
⑥自来水冲洗 30~60s 3~5min
⑦伊红染色液染色 3~5min
⑧□自来水冲洗 1~5s
①□80%乙醇 10~20s
②□90%乙醇 10~20s
③□95%乙醇作用 2 次,每次 1~2min。
④□无水乙醇作用 2 次,每次 2~3min。
⑤□二甲苯透明 3 次,每次 2~3min。
⑥□中性树脂封片。
染色结果:细胞核呈蓝色;细胞质、肌纤维、胶原纤维等呈深浅不一的红色;角蛋白、红细
胞等呈明亮的橙红色。
(二)冰冻切片染色
1、乙谜醚-乙醇混合固定液 5~10s
2、自来水冲洗 2~5s
3、改良 Lillie-Mayer 苏木素染色液滴染 1~2min(可加热至 50℃)。
4、自来水冲洗 2~5s
5、(可选)盐酸乙醇分化 2~5s
6、自来水冲洗 2~5s
7、(可选)蓝化液返蓝 2~5s
8、自来水冲洗 5~10s
9、伊红染色液染色 2~5s
10、自来水冲洗 1~2s
11、80%的乙醇 1~2s
12 、95%的乙醇 1~2s
13、无水乙醇 2~5s
14、苯酚二甲苯(1:3) 2~5s
15、二甲苯透明 3 次,每次 2~5s。
16、中性树脂封片
染色结果:细胞核呈蓝色;细胞质、纤维呈红色。
(三)细胞染色
1、4%多聚甲醛固定 10~20min。
2、自来水冲洗 2 次,每次 2min。
3、蒸馏水冲洗 2 次,每次 2min。